Practica 3 Siembras en medio de cultivo

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

PRACTICA 3, 3 PARCIAL, SIEMBRA EN MEDIO DE CULTIVO

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

Indicaciones

El alumno debe realizar una siembra de medio de cultivo de forma estriada, variada y aplicar el nombre de cada una de ellas de las que anteriormente se dieron en el salón de clases.

Materiales:

6-7 cajas petri de medios de cultivo anteriormente habilitadas o elaboradas.

Asa bacteriológica

Vasos de precipitados con 25 ml de agua destilada

2 mecheros de bunsen

Papel blanco para la meza

Masking tape color café

3-4 Torundas de algodón

2 torundas de algodón con alcohol

Muestras para siembra

• Saliva
• Muestra interdental
• Orina
• Agua preparada de la calle
• Verdura de las que utilizan para preparar tortas
• Muestra de sangre

Tubo cónico de plástico

Técnica de extracción sanguínea

Para esta técnica se utilizan los siguientes materiales:

• Jeringa de 5 ml para extraer 2.5ml
• Torundas de algodón con alcohol
• Torniquete

Se realiza asepsia y antisepsia del piegle del brazo utilizando una torunda de algodón con alcohol

Los movimientos de limpieza son de arriba hacia abajo del brazo al antebrazo nunca regresarlo por que contaminamos el área.

Una vez echa la asepsia y antisepsia iniciamos la técnica de venopunción y para ello debemos manejar nuestra jeringa poder usar desechable.

Se verifica el aseguramiento de la aguja de la jeringa dándole un pequeño giro y nuevamente apretando y posteriormente jalando el embolo hacia atrás de la misma y que a su ves lo regresamos al fondo de la jeringa quedando esta lista para su uso.

Una ves lista nuestra jeringa y ya limpia la zona de pliegue se aplica el torniquete en parte media del brazo para hacer presión y obtener una vaso dilatación del conducto sanguíneo, en el cual se introducirá la aguja de la jeringa que es punzo cortante y ya estando dentro del vaso sanguíneo extraemos la sangre en cantidad de un volumen de 2.5 ml la que depositaremos en el tubo con tapón rojo sin anticoagulante.

No se retira el tapón de el tubo y una vez tomado el tiempo desde su extracción hasta el llenado del tubo registraremos el tiempo de coagulación que es de 1-5minutos hasta 8 minutos el tiempo real esta entre 1-2minutos.

Una vez coagulada la sangre en el tubo de ensaye, retiraremos el tapón y centrifugamos a 1500 revoluciones por minutos durante 5 minutos teniendo como resultado la precipitación del paquete sanguíneo por centrifugación al que le daremos el nombre de separación de paquete y plasma.

Una ves separado el paquete en el tubo de ensaye vacío trasvasamos el plasma sanguíneo el cual es de color amarillo pálido o amarillo paja y se utilizara para realizar la siembra.

Nota: esta técnica se utilizara nuevamente en la practica numero 8 que seria aglutinación

Se sembrara el liquido plasmatico en medio de cultivo utilizando la tecnica con barita de cristal denominada siembra por dispersión.

Desarrollo

Fase pre analítica

Entramos al laboratorio nos colocamos el equipo de bioseguridad completo

El profesor entrego a cada meza distintas cajas de medio de cultivo las cuales eran distintas

Nos dio el profesor una caja de agar de hierro de Kligler, una caja de agar destrosa saubouraud, 2 cajas agar salmonela y síguela y 2 cajas de agar Mac Conkey.

En cada una de las diferentes cajas se iba sembrar cosas diferentes

Primero se hizo la extracción de sangre a navarro Llanes Javier y se deposito la sangre en el tubo de tapón rojo.

Se hizo un raspado de pie a gracia luna Viridiana después se tomo una muestra interdental de la misma persona.

Luego se tomo una muestra interdental a Edgar Eduardo Vásquez

Y también se tomo una muestra de lechuga de una torta de la cafetería.

Fase analítica

La muestra de raspado de pie se sembró en el agar dextrosa sabouraud con el método tradicional de las cuatro estrías. Que es tomando una muestra pequeña con el asa bacteriológica ya esterilizada de el portaobjetos con el cual se realizo el raspado y se hacen cuatro zig-zags.

Con el isótopo con el que se tomo la muestra interdental de Viridiana gracia luna se realizo la siembra en el agar de Mac Conkey con el método de aislamiento por estrías.

Con la muestra interdental de Edgar Eduardo Vázquez se realizo el mismo procedimiento en el mismo agar.

La sangre de Javier Navarro Llanes se dejo coagular y después se centrífugo a 1500 revoluciones por minuto durante 5 minutos.

Después el plasma sanguíneo se vacío a un tubo vacío y de ahí se tomo una muestra con el asa y se sembró en 2 medios de cultivo de agar salmonela y síguela utilizando el método de Kass en el cual se pasa el asa por en medio de la caja de extremo a extremo y se forma una especie de M en zig-zag.

Con la muestra de lechuga se realizo el método de tapete o cuadriculado en el agar de Hierro de Mac Conkey.

Al finalizar todas las siembras se taparon y se entregaron al profesor.

Practica 2, Esterilizacion

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

PRACTICA 2, 3 PARCIAL, ESTERILIZACION

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

Indicaciones

EL alumno debe realizar el proceso de esterilización del producto que ocupara en la práctica de siembras. Para ello requiere tener los conocimientos de la técnica de esterilización en autoclave ya anteriormente dada.

Investigar técnica de esterilización (resumen)

Las autoclaves funcionan permitiendo la entrada o generación de vapor de agua pero restringiendo su salida, hasta obtener una presión interna de 103 kPa, lo cual provoca que el vapor alcance una temperatura de 121 grados centígrados. Un tiempo típico de esterilización a esta temperatura y presión es de 15-20 minutos.

El proceso completo de esterilización en un autoclave se compone de diferentes fases:

Fase de purgado: A medida que la resistencia calienta el agua del fondo del calderón, se va produciendo vapor que desplaza el aire, haciéndolo salir por la válvula de purgado que está abierta. Esta fase termina cuando se alcanza la temperatura de esterilización.

Fase de esterilización: Una vez cerrada la válvula de purgado y alcanzada la temperatura de esterilización previamente seleccionada se inicia el proceso de esterilización.

Fase de descarga: Terminado el proceso de esterilización, deja de funcionar la resistencia calefactora, con lo que deja de producirse vapor y la presión y temperatura del calderón empieza a bajar poco a poco.

Materiales:

Autoclave

Agua destilada

Corriente electrica

Guantes para alta temperatura

Desarrollo

Primero se debe conectar el auto clave y color agua destilada en su interior

Después se introduce el medio de cultivo q se esterilizara tamponeado con tape y algodon

A medida que se va calentando el agua, el aire sale por la valbula de purgado la cual esta abierta

Después se cierra la válvula y cuando alcanza la temperatura de 121 centrigados comienza el proceso de esterilización

Después de 20 minutos la presion y temperatura va bajando

Se tiene mucho cuidado por que el vapor caliente sale por la valbula y puede causar quemaduras graves

Después de que se bajo al temperatura y precion se sacan los matrases de erlenmeyer de el autoclave de mesa.

Nota: Bitacora de trabajoa: el alumno debe realizar su propia vitacora de actividades en la cual regustarra nombre de las practicas, tiempos utilizados, fecha de la elaboración de trabajo, observaciones en esta bitacora debe existir al final del recuadro un recuadro que indique el espacio para firmar de aseptado o rechazado; esta debe ser cuadriculada utilizando la creatividad del alumno.

practica 1, Medio de cultivo

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

PRACTICA 1, 3 PARCIAL, MEDIO DE CULTIVO

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

Indicaciones

Para realizar un medio de cultivo se debe solisitar en el laboratorio de analisis clinicos un formato para anotar los materiales que se utilizaran en la elaboración de un medio de cultivo.

El alumno debe de tener su equipo de bioseguridad completo.

Bestir la meza de laboratorio con papel blanco.

Una persona o dos del grupo deben verificar que la linea de gas np este activada para ello se deben conectar los mecheros y abrir las válvulas que se encuentran por debajo de las mezas.

Y acomodarlas en un formato como bitacora de actividades la cual inicia con este medio de cultivo y termina con la observación microscopica de este.

Una vez repozado el emdio de cultivo se expone al fuego del mechero con un ligero muñequeo hasta dejar que se presente la ebullición cuidando que este producto al hervir no se derrame ya que puede ocacionar quemaduras hasta de 2do grado.

Nota: Si el medio de cultivo se tira por negligencia tendra cada uno d elso integrantes 2 puntos menos en su calificación.

Una vez que ya se dio la ebullición y el tiempo adecuado de 1 minuto se deja enfriar y reposar para poderlo tapar (tamponear) con torundas de algodón muy cuidadosamente sin que estas se vallan al interios del baso, se cubren con maskin tape para asegurarse que esten bien cerrados se etiquetan con el numero de la meza, el nombre del medio de cultivo y la fecha ya terminado este proceso se introduce al auto clave para iniciar la esterilización del medio.

Tecnica de esterilizacion

Ya esterilizado el medio de cultivo se retira del auto clave se deja enfriar poniéndolo en el campo de esterilización de la meza el cual esta a base de 2 mecheros.

Se deja enfriar, se preparan los materiales para vaciado, vaso de precipitados de 50 ml y las cajas petri

Se toma el baso de prelimitado se esteriliza previamente la boquilla se pasa breve mente por el mechero una vez que este listo se le vierte el liquido del medio de cultivo que se depositara en cada caja petri.

Ya estando en las cajas petri trasvasadas se dejan semi tapadas y no en su totalidad para evitar que se forme vapor de agua en su interior.

Se tapan las cajas petri una vez que el alumno verifique que el piso del medio de cultivo sea solidificado ya serradas se estiban o enciman se etiquetan con los datos del medio de cultivo numero de mesa y fecha de elaboración y se entregaran al encargado del laboratorio en forma invertida para su refrigeración.

Si el producto elaborado se contamina en un promedio de 24-72 horas quiere decir que no se tomaron las medidas adecuadas de esterilización por lo que se debe realizar un nuevo medio de cultivo lógico aplicando la sanción requerida en el laboratorio.

Tarea 4, tercer parcial

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

TAREA 4, 3 PARCIAL, CONCEPTOS

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

Bitacora

Libro en el que se lleva la cuenta y razón de los sucesos que tuvieron lugar durante un periodo determinado.

El mantenimiento correctivo o mantenimiento por rotura.

Este mantenimiento agrupa las acciones a realizar ante un funcionamiento incorrecto, deficiente o incompleto que por su naturaleza no pueden planificarse en el tiempo.

Mantenimiento preventivo

Es una actividad programada de inspecciones, tanto de funcionamiento como de seguridad, ajustes, reparaciones, análisis, limpieza, lubricación, calibración, que deben llevarse a cabo en forma periódica en base a un plan establecido. El propósito es prever averías o desperfectos en su estado inicial y corregirlas para mantener la instalación en completa operación a los niveles y eficiencia óptimos.

Frotis

Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida.

Etapa pre-analitica

Preparación del paciente

Tratamiento y procedimientos previos

Hora de toma de muestra

Recolección de la muestra

Preparación de suero, plasma orina y otros.

Almacenamiento Transporte

Etapa analítica

Elección adecuada de metodología

Reactivos, Kits, instrumentos de calidad

Profesional capacitado

Control interno

Control externo

Sueros certificados

Tiempo optimo de proceso

Manual del procedimiento

Rapidez en las técnicas que lo requieren

Etapa post analítica

Análisis de resultados

Confirmación de resultados

Valores Biológicos de referencia

Tiempo oportuno de informe

Transcripción de resultados

Personal administrativo capacitado

Control de calidad en relación a la clínica

Comunicación constante para verificar la interpretación correcta del resultado.

Tarea 3, tercer parcial

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

TAREA 3, 3 PARCIAL, TIPOS DE TINCIONES

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

ZIEHL-NEELSEN (BAAR)

Las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (ácidos micólicos) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloracíón con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan ácido-alcohol resistentes. Las micobacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras.

Se ha desarrollado una coloración de ácido-alcohol resistencia modificada que diferencia las especies de Nocardia (bacterias ramificadas filamentosas cuyas paredes celulares contienen ácidos-grasos de unos 50 átomos de carbono), de los actinomiceos (muy semejantes pero no ácido-alcohol resistentes). Nocardia spp son decoloradas por la mezcla ácido-alcohol estándar pero no por un tratamiento más suave con ácido sulfúrico 0,5 a 1%. Estos microorganismos se denominan ácido-alcohol resistentes parciales o débiles.

El frotis se tiñe durante unos 5 min con Carbolfucsina aplicando calor suave. Lavar con agua. Decolorar con alcohol etílico 95% con un 3% de ClH concentrado. Lavar y teñir durante 30-60 seg con Azul de Metileno (color de contraste). Lavar y secar

Tincion directa

En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato.

Tincion indirecta

En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.

Tinción de Gram o coloración Gram

Es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa.

Tincion azul metileno
Para determinados fines pueden ser utilies las tinciones con azul de metileno de Loeffler
Se utilizan para observar morfologia, agrupacion, elementos celulares ,leucocitos, celulas epiteliales,etc

tarea 2, tercer parcial

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

TAREA 2, 3 PARCIAL, MEDIOS DE CULTIVO

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

MEDIOS DE CULTIVO

Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio.

El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el medio de cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el cultivo.

Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grados de humedad y presión de oxigeno adecuado, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad.

El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de medios de cultivo. Se licua completamente ala temperatura del agua hirviendo y se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en el.

Clasificación de los medios de cultivo basándose en su composición química.

Medios sinteticos o químicamente definidos. Llevan fuente de carbono, fuente d enitrogeno, sales que suplan iones (P, K, Mg, Fe, Ca, ) otros elementos como son estimuladores del crecimiento ( eritritol para Brucella abortus) pero siempre a concentraciones conocidas.

Medios complejos o de composición idenfinida. Estos medios llevan ingredientes como extracto de levadura, peptona, infusión de cerebro, extracto de carne, etc. Que contiene nutrientes en abundancia pero sin saber con exactitud la composición cualitativa ni cuantitativa de estos nutrientes.

Medios de enriquecimiento. Son medios complejos (normalmente) con adictivos adicionales para favorecer el crecimiento de determinados organismos (particularmente heterótrofos exigentes).

Medios selectivos. Son aquellos que favorecen por su diseño el crecimiento específico de un microorganismo particular (o grupo de microorganismos). Es de gran utilidad para el aislamiento de microorganismos a partir de una población microbiana mixta.

Medios diferenciales. Son aquellos destinados a facilitar la discriminación de microorganismos de una mezcla por sus propiedades diferenciales de crecimiento en dicho medio.

Medios de mantenimiento. Suelen ser distintos a los de crecimiento optimo ya que el crecimiento rápido y prolífico suele ocasionar la muerte rápida de las células.

SIEMBRA

Sembrar o inocular es introducir artificialmente una porción de muestra (inóculo) en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento.
La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.

Cultivo en medio líquido

Habitualmente se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.

Cultivo en medio sólido

Puede ser en tubos o placas.

a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.

b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.

c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.

En superficie

• 1) Se colocan 0.1 mL de la dilución de la muestra con pipeta estéril en el centro de la placa, y se distribuye con un rastrillo estéril.
  2) Se siembra con un ansa para aislar, como se explica más adelante.
  3) Se siembra con un hisopo.

Incorporada

• Se coloca 1 mL de la muestra en una placa estéril vacía, en el centro de la misma. Sobre ella se agregan 20 mL de medio de cultivo fundido y termostatizado a 45ºC; luego se agita la placa, moviéndola 4 veces en sentido horario, 4 en sentido antihorario, una vez de arriba a abajo, una vez hacia los costados y una vez en sentido antihorario.

Las placas se incuban invertidas, ya que la alta concentración de agua en el medio puede provocar condensación durante la incubación y si cae sobre la superficie del agar, se extiende dando un crecimiento confluente.

En medio sólido cada célula viable dará origen a una colonia y por lo tanto la siembra en placas se puede utilizar, no solo para cultivar microorganismos, sino además para contar y aislar.

En general cuando se quieren tener colonias aisladas a partir de un material determinado, es necesario diluir la muestra en tubos con suero fisiológico estéril.

AISLAMIENTO

Aislar: Es separar un tipo de microorganismo a partir de un población que los contiene de varios tipos. En habitats naturales, raramente encontramos a los microorganismos en cultivo puro (un solo tipo de microorganismo), por lo tanto es necesario hacer algún procedimiento de aislamiento para separar e identificar los distintos tipos de m.o. presentes.

El aislamiento se puede lograr directamente a partir de una muestra cuando el o los m.o. están en una proporción adecuada.

Cuando el m.o. que se desea aislar e identificar se encuentra en baja proporción en la muestra, o interesa un solo tipo de m.o., se lleva a cabo un procedimiento llamado búsqueda que involucra una primera etapa de aumento del número de microorganismos del tipo que se desea aislar en relación al resto de la población. Luego se aisla por el método de estrías o por dilución y se identifica.

Para aislar se utiliza alguno de los siguientes procedimientos:

a) aislamiento por estrías
b) aislamiento por dilución

Aislamiento en placa por estrías

Existen distintas técnicas, el objeto es obtener colonias aisladas.

Técnica a.

Consiste en cargar el ansa con la muestra y hacer estrías paralelas en la cuarta parte de la superficie de la placa; se quema el ansa, se enfría, se gira la placa 90º y se vuelve a estriar tocando 3 o 4 veces el área sembrada inicialmente y cubriendo otro cuarto de placa. Por último, sin quemar el ansa, se estría el resto de la superficie sin sembrar.

Técnica b

Con el ansa cargada se hacen 3 o 4 estrías; se quema el ansa, se hacen 3 o 4 estrías perpendiculares a las anteriores, se quema el ansa y se repite el procedimiento hasta agotar la superficie de la placa.

Aislamiento por dilución en medio sólido

Se emplean tanto el método de siembra incorporada como el de siembra en superficie. Suele ser necesario diluir la muestra. Para ello se puede preparar las diluciones decimales en condiciones asépticas usando suero fisiológico o algún otro diluyente.

La siembra incorporada se realiza tal como se describió anteriormente. También se pueden preparar las diluciones directamente en tubos de agar fundido y termostatizado (20 mL) se agita por rotación entre las manos y se vierte en placas de Petri estériles.

AISLAMIENTO DE MICROORGANISMOS ANAEROBIOS

Para aislar microorganismos anaerobios que son rápidamente destruidos por exposición al oxígeno, las placas pueden ser preparadas en la forma usual, y luego de sembradas, incubadas en recipientes cerrados en atmósfera sin oxígeno.

También se puede sembrar diluciones en tubos con agar fundido y termostatizado que luego se tapan con una capa de vaselina-parafina, para evitar el acceso de aire.

Con anaerobios más sensibles al oxígeno, se trabaja en cámaras anaerobicas, o también usando la técnica del "roll-tube", que es un tubo en el que el agar se deposita en las paredes al hacerlo girar mientras se enfría; se trabaja gaseando el tubo continuamente con gas libre de O2 mientras el tubo está destapado.

tarea 1 del 3 parcial

CBTIS NO. 155

OPERAR EQUIPO Y MATERIALES DE LABORATORIO

DR. VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

2LV(M)

TAREA 1, 3 PARCIAL, BACTERIAS

GRANADOS JAIME LUZ MARIA

Paramecium Los paramecios (género Paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato o elipsoide, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica, como charcos y estanques.

Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.

En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleoeucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.

Salmonella

Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.

Escherichia coli

Escherichia coli (E. coli) es quizás el organismo procarionte más estudiado por el ser humano, se trata de una bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Fue descrita por primera vez en 1885 por Theodore von Escherich, bacteriólogo alemán, quién la denominó Bacterium coli. Posteriormente la taxonomía le adjudicó el nombre de Escherichia coli, en honor a su descubridor. Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--.

Es una bacteria utilizada frecuentemente en experimentos de genética y biotecnología molecular.

Proteus

Proteus es un genero de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de

muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan

lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de

hacerlo en el test TSI (Triple Sugar Iron). Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas.

Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol.

Proteus es un género de bacterias ubicuos, residentes del tracto intestinal del hombre y otros animales.

Crecen en medios corrientes y moderadamente selectivos a temperatura corporal de 37ºC. Crecen formando capas diseminadas por virtud de su gran motilidad.

Hay tres especies que causan infecciones oportunistas en el hombre: P. vulgaris, P. mirabilis, y P. penneri. Causan infecciones urinarias, enteritis, abscesos hepáticos, meningitis, otitis media y neumonía con o sin empiema, entre otros. Es un frecuente invasor secundario de quemaduras y heridas, así como infecciones nosocomiales.

Todas las especies de Proteus son resistentes a la ampicilina.

Brucella

Brucella es un género de bacterias Gram negativas. Son cocobacilos pequeños (0,5-0,7 por 0.6-1.5 µm), no-móviles y encapsulados. Se conocen unas pocas especies de Brucella, cada una de las cuales se diferencia ligeramente en la especificidad del huésped: B. melitensis infecta cabras y ovejas, B. abortus infecta vacas, B. suis infecta cerdos, B. ovis infecta ovejas y B. neotomae. Recientemente se ha descubierto una nueva especie en mamíferos marinos: B. pinnipediae.

Brucella es la causa de la brucelosis. Es transmitida por la

ingestión de comida infectada, contacto directo con un animal infectado o por inhalación de aerosoles. La brucelosis se produce principalmente por exposición ocupacional y por el consumo de productos lácteos no pasteurizados.

La brucelosis humana no se considera una enfermedad contagiosa y las personas solo se infectan por contacto con los fluidos animales. La brucelosis también se considera una enfermedad laboral puesto que tiene una alta incidencia entre los trabajadores que trabajan con animales.

La brucelosis a menudo se adquiere en el laboratorio. La infección se suele producir cuando no se sospecha de la enfermedad y las muestras son manipuladas por el personal del laboratorio antes de que cultivo resulte positivo.

Brucella se aisla de cultivos sobre un medio de sangre. Mediante la tinción de Gram aparecen como densas aglomeraciones de cocobacilos Gram-negativos.

Brucella podría también detectarse en la médula ósea.

No hay un procedimiento clínico para el tratamiento óptimo, pero la combinación más utilizada implica tres semanas de tratamiento con rifampicina y doxiciclina dos veces al día, que parece ser eficaz.